保存：
大多肽在-20℃很穩定，特別是冷凍干燥并保存在干燥器中，在將它們暴露于空氣之前， 冷凍干燥多肽可以放于室溫。這將是濕度影響減少，當無法冷凍干燥時，的方法是以小的工作樣量存放。 
對于含Cys, Met orTrP的多肽，脫氧緩沖劑對其溶解*，因為這種多肽可易空氣氧化， 在封瓶前，慢慢流過多肽的氮氣或氬氣也會降低氧化作用。含Gln或Asn的多肽也容易降解，所有這些肽與不含這些有問題解苷的那些肽相比，生命期有限。 
溶解性：
大多肽的道選溶劑是超純抽氣水。稀乙酸或氨水分別對于堿性或酸性多肽的溶解很重要。這些方法不溶的多肽， 需要DMF、脲、guanidiniam chloride或acetonitnle來溶解，這些溶劑可能某些實驗有副作用。所以我們建議設計多肽時要加注意。
殘基Ala, Cys , Ile, Leu, Met, Phe和Val將全增加多肽的溶解難度。 
您需要特殊的多肽或任何技術幫助，請隨時與我們。 我們包你*滿意，對于我們不能適當合成的順序，我們不收費。

多肽的保存和操做

包裝 1mg或更少的多肽按凈重包裝，聲明的小瓶重不含相關抗離子和水。 例如，氨基酸分析決定的肽含量是80%， 在1mg樣品中，那么瓶中毛重是1.25mg。
大量的多肽以毛重算。標出的重量含相關抗離子和水， 例如，25mg樣品中肽百分比為90%，那么，實際肽量為25mg×90%=22.5mg
不要把肽含量和純度搞混了。肽的純度可能是100%， 而肽含量相關帶電基團（如Arg, Lys ）的抗離子量和肽新水性決定。這是合成肽的本身特性。

凍干肽的保存
所有產品應存于冰箱， 為-20℃。多數肽以此方法可以存放幾年不變。

肽溶液的保存
溶液肽遠比凍干形式不穩定，溶液應為中性pH(pH5-7), -20℃保存的，為避免樣品的反復凍融， 分成小樣存放。一份樣品融凍后未用完， 應扔掉，細菌降解有時會成為溶液肽的麻煩， 為克服此，肽應溶于無菌水， 或肽溶液用0.2μ M濾膜過濾。

多肽的重建和操作

多數肽溶于無菌蒸溜水。初次溶解時，要注意使初始濃度比要求濃度大，如果多肽僅有限溶解性， 這便允許加入其它溶解劑或緩沖鹽。
如果多肽在水中的溶解性有限，有幾種選擇可幫助溶解：
對堿性肽用稀乙酸（含Arg , Lys , His）
酸性肽用稀氨水（含Asp, Glu）
對極疏水的肽用10%有機修飾物（Acetonitnile , Methanol）
極不溶的肽用DM50或DMF
guanicline hydrochloride或脲的濃溶液也很有用， 與上述方法合用， 聲處理也是溶解多肽的有效手段。

多肽的包裝
目錄中所有多肽除特別說明外，純度為95~98%。包裝為小瓶凍干粉。 除特別注明外，多肽凈重包裝， 例如，1mg瓶的β-amyloid 1-40含1mg的多肽。多肽凈重由氨基酸分析得到的肽含量計算。例如， 一個多肽樣品毛重5mg，氨基酸含量85%， 多肽凈重為5mg×0.85=4.25mg。請注意， 多肽含量不是多肽純度，與抗離子象乙酸鹽和溶劑，特別是水結合量合成多肽的本身特性。多肽純度可能達100%， 但合成品中多肽含量由氨基酸組成，硫水性， 和多肽對溶劑和離子的暴露決定，特別是在純化過程中， 無論多肽如何純，凍干粉多肽含量一般為70-85%。 剩余15-30%由其它基本非肽成份構成。

多肽應用和保存
多肽具廣泛的溶解性。多肽不溶的主要問題是形成二級結構。除了zui太肽外，這點都會發生， 在有多重疏水殘基的肽中更顯著。鹽會促進二級結構形成。我們建議先在無菌蒸餾水或去離子中溶解多肽。如需要增加溶解率， 可用聲處理。溶解仍有問題， 加少量稀乙酸（10%）或氨水，會便于溶解。
要長期保存多肽， 冷凍干燥，冷干粉可在-20℃或更低存放幾年而很少或無降解。溶液中的多肽遠不穩定。 多肽易受細菌降解，應用無菌純化水溶解。
含有Met, Cgs或Try殘基的多肽溶液由于氧化，壽命有限。應溶于無氧溶劑， 為防止重復凍融的破壞， 建議溶解過量的肽的便實驗，其余多肽以固體形成保存。

固相多肽合成Fmoc方法

任何多肽鏈的關鍵連接為肽鍵，由一個氨基酸的氨基與另氨基酸的縮合形成。通常一個氨基酸由一個中心碳原子組成，它由四個基它基團包圍： 氨基、羰基、基和側鏈。 側鏈，稱為R，區別不同氨基酸的結構。某些側鏈含有干擾肽鍵形成的功能團。因此側鏈功能團的封閉很重要。
圖工顯示了Fmoc合成的一般流程，首先*個Fmoc氨基酸通過一個酸性接頭接到不溶載體樹脂上，Fmoc去保護通過用堿處理樹脂來完成，一般是Poperidine。 用預先激活或原位激活連接第二個Fmoc氨基酸。要求總多肽合成后，通過TFA分離來除去樹脂和去保護。

Fmoc分離

固相多肽合成中多肽分離主要用酸解

Fmoc法用弱酸，比如TFA或TMSBr。各種添加劑， 一般為thiol compound , 水和酚，用來保護多肽的免分離中Carbocation的破壞。

下列保護基與TFA和TMSBr分離相合：（略）

基于保護基團的類別，必須使用去保護劑的組合。 例如， 當Boc和tButyl存在時，它們的Carbocation對應物能與Trp, Tyr和Met反應形成tbutyl產物。EDT是極有效的t-butyl trifluoroacetate清除劑， 但它不保護Trp。 因此，必須加水以控制烷基化。Trp的吲哚環和Tyr的OH極易與Pmc反應。水再次表現出對此反應的抑制。Trt和Mtr基團也有相似情形。較此適當組合清除劑將極大降低副反應。

tBoc和CBZ多肽合成

tBoc合成法見圖3

tBoc法的分離法

Boc使用強酸，比如HF，TFMSA或TFMoTf。分離加入各種添加劑， 一般為thiol化合物以保護多肽免受carbocation破壞。

HF分離法（如下）略

TFMSOTf分離

TMSOTf分離

SPPS的一般連接方法

適于固相多肽合成的連接反應要求酰化反應，對同源多肽zui有效。

Fmoc SPPS連接方法 FmocSPPSzui常用的連接法是活性酯， 要么原位，要預先激活。 起初P-nitrophenyl和N-hydnxysuccinimide激活酰是常用形式。 甚至，有HOBt時，連接反應也很慢， 此外，Fmoc氨基酸ONSu、酯與succinimido-carbonyl-β-alanine -N-Hydroxysuccinidide酯副產物的形成相關。今天zui常用的激活酯是Opfp和Odhbt。有HoBt時反應速度極快，副產物少。

另一方面， 使用象DCC，HBTU，BOP，BOP-Ce，或TBTU活化劑時， 能原位進行許多連接反應。Carbondiimide的直接添加是選擇。 然而，TBTU和HBTU第二個出現，接著BoP, zui后是BoP-CE。再者， 酯連接發現BoP/HoBt>Carbodiimido/HoBt> Carbodiimido/ODHbT> Carbodiimide/Opfp。

zui近以來，HOAt和其對應Uronium鹽同類物HATU的發展，發現此HoBt和HBTU具更強催化活性， 結果是增加連接產出，縮短連接時間， 消旋降低。 故此，更適合阻位氨基酸的連接，使得難合成肽的合成更成功。

tBoc SPPS的普通連接法

Carbodiimides, 主要是DCC是使用多年的連接試劑，主要的問題是激活和酰化過程中dicyclohexylurea的沉淀。并且伴有許多副反應， 已有幾種產生可溶脲的Carbodiimide，例如DIC, t-butylmethyl-和t-tatyllethyl-carbodiimide, 但是這些試劑未解決副反應的問題。結果生產出了新的激活劑。 首先是ＢＯＰ，隨后是PyBrop, PyBOP, HBTU, TBTU和ＨＡＴＵ。所有前述試劑都要活性堿基。

所有前面討論的ＤＣＣ及其衍生物都通過對稱酐的形成起作。通常， 對稱酐反應性*已廣泛用于ＳＰＳＳ，特別t-Boc合成中， 對稱酐整合入Fmoc氨基酸有一些困難，例如，從N-(3-dimethylamino propyl ) -N?/FONT>-ethyl -carbodiimides -HG制備的對稱酐， 由于Z-alkory-5(4H)-oxayolne中間體的形成， 在Carbodiimidie和tertiany amines存在時重排， 還有， 不是所有的Fmoc 對稱酐都溶于ＤＣＭ，或者無論所有試劑如何都不溶。
對稱酐的另一種改變是混合酐，Carboxglic-Carbonate或Ｃarboxglic-phosphinic混合酐， 典型的情況且是， 由活性isobutyl-或isopropyl-choroformate制備這些， 用Nox被阻氨基酸代替phosphinic chloride。通常反應迅速及少或無有副反應。

混合酐，N-carboxy酐(NCAS), 也叫，Leuch酐，已廣泛用于多聚氨基酸制備，這類化合物聯合Nox保護和活化炭基，一旦和另一個氨基酸或肽殘基反應， 釋放CO2做為副產物。

用處理α氨基酸很容易得到ＮＣＡ衍生物，在嚴格調控條件下， ＮＣＡ衍生物常結晶析出，便可使用。這些條件要求嚴格控制合成中的ＰＨ，在ＰＨ值低于１０時，ＮＣＡ和肽或氨基酸殘基反應產物，肽-Carbamate易失去CO2形成自由α－氨基端， 發生聚合。pH10.5時，ＮＣＡ便水解隆解。 所以反應在ＰＨ10.2條件下進行。別的條件要求是反應在０℃進行2分鐘，要強烈攪動。 反應產物老消旋， 帶有自由α-氨基，可以增加另一個酐而延伸。

液相合成
基于將單個N-α保護氨基酸反復加到生長的氨基成份上，合成一步步地進行， 通常從合成鏈的C端氨基酸開始，接著的單個氨基酸的連接通過用DCC，混合炭酐， 或N-carboxy酐方法實現。Carbodiimide方法包括用DCC做連接劑連接N-和C-保護氨基酸。重要的是， 這種連接試劑促接N保護氨基酸自己炭基和C保護氨基酸自由氨基間的縮水，形成肽鏈， 同時產出N，N?/FONT>-dyaylcohercylurea副產物。 然而， 此方法因其導致消旋的副反應，或在強堿存在時形成5(4H)-oxaylones和N-acylurea而受到影響。慶幸地是， 這些副反應能zui小化，如果還不能*消除。方法是加入象HoSu或HoBT這樣的連接催化劑， 此外，此方法也可用于合成N保護氨基酸的活性酯衍生物。依次產生的活性酯將自發與任何別的C保護氨基酸或肽反應形成新的肽。 
當從副產品, diaydohexylurea分離活性酯有困難時，可用混合Carbonic酐方法， 此方法由兩步組成，*步是在有tertiary堿的有機溶劑中用適當的酰基氯激活Nx保護氨基酸的炭基，第二步是讓肽或氨基酸的自由氨基與Carbonic酐反應。Carbonic酐通常加到自由氨基的14倍。
雖然此方法在低溫時高產，產品純， 但也有其缺點， 例如，由羰基的強激活酐衍生物有消旋傾向。然而此問題在使用Nx-α-Urethane保護基（Cb2, 或tBoc）時便不會發生。進一步： 由于高反應性， 混合Carbonic酐 傾向5(4H)-oxagolomes, Urerbanes diacyimide, 酯的形成， 并易失調。
促進這些副反應的條件是高溫，延長激活時間（即，混合酐形成后， 加到alkylchlorocarbonate和amine成份的時間，amine組成的空間占位，平共處和混合酐的不完整形成。幸運的是， 大多這些副反應， 除形成啞唑酮和脲烷外，可通過低溫進行反應（~-15℃），大為減少，并且縮短活化時間（~1-2分鐘）。為了使啞唑酮和尿烷形成zui少，要實行如下措施：1）必要性須用無水有機溶劑，乙酸，四氫 喃，t-butand, 或acetonitrile; 2） 應使用tertiary堿和N-methglmorpholine；3） 必須用C b2或tBoc N- α保護氨基酸。
雖然用isobutyl-和ethylchlorocarbonate常用來形成羰酐， 但確有別的連接試劑，例如，EEQD和IIQD用來與CarboxaP成份反應形成erhyl-或isobutyl carbonate衍生物。 不同于傳統酐程序，EEQD和IIQD不要求堿，也不要求低溫，通常要求一種有機溶劑（有許多也用）中0.1-0.4M濃度的等摩爾量的羰和氨成份。之后EEQD或IIQD多加5-10%, 溫合液室溫攪拌15-24小時。真空除去溶劑后，殘留物溶于乙酸， 用1NHaHCO3 , 10% 枸橡酸和鹽水洗劑，之后用無水Na2So4干燥，蒸發，產品可以重晶結或層析純化。
這種方法避免了用堿，但仍有消旋和尿烷副產物，水平與經典相當。 所以優勢中于容易方便，但應注意，兩種方法的詳細比較，目前為重仍未有。

HPLC分析和純化
分析HPLC使用柱子和泵系統，可以經受傳遞高壓，這樣可以用極細的微粒（3-10μ m）做填料。由此多肽要在幾分鐘內高度被分析。
HPLC分兩類：離子交換和反相。 離子交換HPLC依靠多肽和固相間的直接電荷相互作用。柱子在一定PH范圍帶有特定電荷衍變成一種離子體，而多肽或多肽混合物，由其氨基酸組成表現出相反電荷。 分離是一種電荷相互作用，通過可變PH， 離子強度， 或兩者洗脫出多肽，通常， 先用低離子強度的溶液，以后逐漸加強或一步一步加強，直到多肽火柱中洗脫出。離子交換分離的一個例子使用強陽離子交換柱。如sulfoethylaspartimide通過酸性PH中帶正電來分離。
反相HPLC條件與正常層析正相反。多肽通過疏水作用連到柱上，用降低離子強度洗脫， 如增加洗脫劑的疏水性。通常柱子由共價吸附到硅上的碳氫烷鏈構成，這種鏈長度為G4-G8碳原子。 由于洗脫是一種疏水作用。長鏈柱比短鏈對小的， 高帶電肽好。另一方面大的疏水肽用短鏈柱洗脫好。 然而，總體實踐中， 這兩類柱互變無多少顯著差別，別類載體由碳水化合物構成， 比如苯基。
典型的操作常由兩綬沖劑組成，0.1%TFA-H2o和80% acetonitrile 0.1%TFA--H2o稀acetonitrile。用線型梯變以每分鐘0.5%到1.0%改變的速度混合。常見分析和純化用柱為4.6×250mm(3-10μ m)和22×250mm(10μ m). 如果用徑向填柱，那么大小是8×100（3-10μ m）和25×250mm(10μ m)
大量各種緩沖劑含許多不同試劑，比如heptafluorobutyric酸，0.1%磷酸， 稀He formic酸(5-6%, pH2-4), 10-100mM NH4HCO3, 醋酸鈉/氨，TFA/TEA，磷酸鈉或鉀，異戊酚。這樣許多不同組合可形成緩沖劑，但要注意一點：硅反相柱料不能長時間暴露于高pH，甚至微堿pH， 因為這樣會破壞柱子。

純化
SPPS提取的粗肽含許多副產物，早期的純化方法包括離子交換，分溶和反溶注析， 更現代的方法是反相HPLC，一般于60殘基或更少的肽很成功。 當反相HPLC失敗時，可按合離子交換HPLC。
通常分析HPLC結果用于決定純化條件。例如，一種太肽用30%（0.1%TFA）acetonitrile洗脫出， 這是分析HPL定出的。那么選擇acctonitrile濃度更低的緩沖液使得在isocratic條件下（比如28%,0.1% TFA acetonitrile）多肽在溶劑保持時間4-5分鐘后洗脫。這樣， 根據柱子類型， 我們的純化條件用16-35%(0.1%TFA) acetonitrile線型梯度， 在一兩小時內完成，之后用分析HPLC查檢各種比例，使用我們isocranic條件選定的緩沖液。