我們可能都有過這樣的經歷：

    辛苦呵護的細胞，怎么也不愿意貼壁；

    貼壁了又很容易成塊或者成團掉下來；

    原本貼壁的細胞，復蘇后細胞不貼壁了；

    ........

遇到這樣的問題你都如何解決？這次我們就來聊聊，為啥你的細胞為這么矯情，不愿貼壁呢？

體外培養細胞貼壁與什么有關？

首先并不是所有的細胞在體外培養的情況下都會貼壁，但大部分來自實體組織器官的細胞都會貼壁。

貼壁的過程可能是這樣的：細胞首先分泌細胞外基質，這種細胞外基質黏附在支持物的表面（培養瓶，培養皿的底面）。然后，細胞通過其表面表達的黏附因子與這些細胞外基質結合。

所以細胞貼壁與否和細胞本身分泌細胞外基質的能力以及細胞本身表達的黏附分子的數量有關，也與培養皿壁的表面結構有關。

 

細胞為什么要貼壁？

細胞貼壁的過程使形態發生很大變化，細胞形態改變是細胞內骨架（是真核細胞中的蛋白纖維網架體系，由微管、微絲及中間纖維組成的體系）本身和細胞外基質共同作用的結果。

密度大于培養基的細胞（絕大部分細胞）會沉降在底面上，那么細胞要生存必定得改善這個環境，分泌細胞外基質，改善底面的結構，然后很自然就貼附在底面上了。

密度小于水的細胞，如脂肪細胞，漂浮在液面上，所以不可能貼在底面上，但是如果將培養液加滿，那么細胞能夠與培養瓶上面的壁接觸同樣可以貼壁。因此可以說，細胞貼壁是適應環境的一種反應。

細胞不貼壁，可能是這些原因？

    細胞的傳代zui重要的是胰酶處理時間：消化不夠細胞本身就是成團的；若胰酶處理太久，容易造成細胞膜蛋白損傷，使細胞貼壁不緊，顯微鏡下觀察立體感不強，嚴重的時候甚至會造成細胞死亡。

    缺少貼壁因子：血清中含有促貼壁因子，而無血清培養基工藝中由于缺少這種促貼壁因子，細胞的貼壁效果會下降很多。

    支原體或細菌的污染。

    培養液配置、儲存不當，如 pH 值過堿，Gln 量太少等原因。

    復蘇的細胞本身狀態不好，已經老化，失去貼附性。

    接種細胞數目太少，無法分泌足夠的細胞外基質。

    復蘇時處理速度太慢，復蘇過程不當。

如何促進貼壁效果？

1. 適度消化細胞：HepG- 2、A549、Hela、SGC- 7901 幾種癌細胞處理時間可適當放長，一般處理 5 - 6 min，C2C12、COS- 7、NIH- 3T3 比較容易脫落，2 min 足矣，P19Cl6 和 293 細胞貼壁不緊，可在 PBS 漂洗后，直接換新鮮培養基打散。

2. 用塑料瓶培養，如果是玻璃瓶, 那么可以用鼠尾膠原包被一下培養瓶，或者用鹽酸對培養瓶進行蝕刻，或者涂 Laminin/fibronectin/collagen/BSA，也可以幫助細胞貼附新的培養瓶，細胞不易貼壁，建議加多聚賴氨酸處理。

3. 正確配制消化液或培養液。

4. 使用合適的細胞外基質或貼壁試劑。

5. 復蘇新的細胞，第一周用 20% 血清幫助細胞復原。

6. 傳代接種一定要鋪的均勻，避免細胞抱團生長。

7. 細胞傳代 24 小時之內，不要晃動，以免影響貼壁。

8. 體內上皮細胞生長在膠原構成的基膜上，因此培養在有膠原的底物上有利于生長。人或小鼠表皮細胞培養，可以用γ射線照射后的 3T3 細胞為飼養層，另外降低 pH、Ca2 +含量和溫度，均有利于上皮細胞生長。