植物蛋白ELISA試劑盒提取實驗操作步驟和常見問題有哪些呢？
首先我們的清楚：植物蛋白的組成和規格：無色透明的提取試劑50 ml或100 ml。
貯存：4°C，密封避光1年。
用途：提取多種植物組織和細胞的可溶性和疏水性蛋白。如蘋果、花生、土豆、煙葉、菠菜、梅花等。
實驗具體操作步驟：
1. 組織勻漿，必須充分勻漿，此步驟非常關鍵：
(1) 凍存組織勻漿：預先將研缽置于-20°C ~-70°C冰箱內冷凍。取液氮凍存的植物組織，放入冰凍的研缽內研磨至粉末狀，
注意使組織一直處于冰凍狀態，如組織顏色加深或變黑通常表明組織已融化。將研磨好的組織轉移到EP 管中，按每200 mg植物
組織加500 ul的比例加提取試劑，混勻后冰上放置20分鐘，其間可數次顛倒混勻，以便蛋白溶解。
(2) 新鮮組織勻漿：取新鮮組織放入研缽中，按每200 mg植物組織加500ul的比例加提取試劑，充分研磨使勻漿液中看不到大的
塊狀或片狀組織，保證組織研磨破碎。轉移至離心管內，冰上放置20分鐘。
2. 離心：12000 g離心15分鐘，棄去沉淀。蛋白在上清中。
3. 取離心后的上清，轉移至新管，立即使用或-70°C凍存。通常上清內植物色素已基本去除，如有少量殘留亦不影響蛋白定量
及電泳實驗。建議用BCA方法進蛋白定量(我公司的BCA蛋白定量試劑盒#P1511)。
如進行雙向電泳或欲*清除色素等雜質可進行以下內驟:
1. 取上清液加入4倍體積的丙酮或甲醇混勻，-20°C至少一小時以充分沉淀蛋白質。
2. 12000 g離心15分鐘沉淀蛋白。
3. 棄去上清。自然干燥蛋白沉淀，依據試驗將沉淀溶于相應的緩沖液。如進行Western Blot 亦可用提取試劑溶解。
常見問題及解決方法：
一. 提取的蛋白量少：
1) 組織蛋白含量較少，如水果等，可增加組織量；
2) 組織勻漿不充分，如纖維較多的組織，破碎較困難，應適當延長勻漿時間；
3) 組織過老或水分丟失致使其干燥，故盡量選用新鮮較嫩的組織；
4) 甲醇或丙酮沉淀后蛋白溶解不充分，應延長溶解時間或使用較強的蛋白溶解劑。
二. 蛋白質量不佳：
1)提取的蛋白有多酚或色素等雜質殘留，可重復用丙酮或甲醇沉淀；
2) 蛋白質降解，操作各步驟均應在冰上進行；加入蛋白酶抑制劑。
